用于組織重建的I型膠原支架通常具有受損的機械特性,例如剛度有限和缺乏強度。本研究提出了一種新技術,通過用濃縮鹽溶液處理來微調膠原蛋白支架的剛度和生物降解性。膠原蛋白支架通過鑄造、冷凍和凍干過程制備。支架用90%飽和鹽溶液處理,鹽取自Hofmeister系列,然后進行化學交聯。用由二價陽離子和一價陰離子組成的鹽處理,例如CaCl2,導致支架快速收縮至原始表面積的約 10%。有效鹽主要在霍夫邁斯特系列的離液末端。收縮的支架比不收縮的對照支架硬10倍以上,并且顯示出孔徑減小和腫脹,組織較少的膠原纖維。這種效應可以精確到單個膠原蛋白分子的水平,并表明收縮效應是由三螺旋內穩定氫鍵的破壞驅動的。鈣中無鈣沉積物2處理過的支架。與H相比,大鼠皮下植入顯示出相似的生物相容性2O和NaCl處理支架,但減少了細胞內流并增加了結構完整性,3個月后沒有顯著降解的跡象。綜上所述,高濃度離液鹽可用于調節膠原支架的力學特性,而不影響生物相容性。該技術可用于再生醫學中,以加強膠原蛋白支架以更好地順應周圍組織,但也可用于例如緩釋藥物輸送系統。
氯化鈣的剛度2、氯化鈉和氫2用PIUMA納米壓頭測量O處理過的膠原蛋白支架(Optics11,荷蘭阿姆斯特丹;圖 3A)。16在測量之前,將支架在PBS中孵育30分鐘,然后在PBS中的60%牛血清白蛋白中進行5分鐘的鈍化步驟,以防止探針粘附在支架上。每個樣品在25×1 mm的網格中進行1個壓痕,單個壓痕之間的距離為200μm(圖3B)。對于軟樣品,壓頭探頭的剛度為 0.05 N m?1對于較硬的樣品,使用剛度為 0.47 N m 的探頭?1.兩個探頭的直徑均為180μm。壓痕深度,以 5 μm s 的速度達到?1,為15μm,探針保持在原位2秒(壓痕時間)。每種腳手架類型獨立測量3次。
使用納米壓痕評估剛度(圖3)。氯化鈣2、氯化鈉和氫2O處理過的支架獨立測量三次,每個支架在不同位置有25個壓痕(圖3B)。氯化鈣2腳手架 (7.4 × 103Pa)比NaCl更硬(1.2×103帕)和H2O 處理支架 (4.4 × 102Pa)如(圖3C)所示。峰值顯示剛度大于 3.0 × 104Pa,最有可能的是當正好凹進在多孔支架中的膠原蛋白結構頂部時,表明CaCl的剛度2處理過的膠原蛋白材料高于 7.4 × 103帕。
Piuma是功能強大的臺式儀器,可探索水凝膠、生理組織和生物工程材料的微觀機械特性。表征尺度從宏觀直至細胞。專為分析測試軟材料而設計,測量復雜和不規則材料在生理條件下的力學性能。杭州軒轅科技有限公司
● 內置攝像鏡頭,方便實時觀察樣品臺
● 實時分析計算測量結果,原始數據并將以文本文件存儲,方便任何時候導入Dataviewer軟件進行復雜處理
● 探針經過預先校準,即插即用。對于時間敏感的樣品確保了快速測量
● 光纖干涉MEMS技術能夠以無損的方式測量即使是最軟的材料,并保證分辨率。同時探針可以重復使用Piuma軒轅納米壓痕儀Piuma軒轅納米壓痕儀
模量測試范圍 | 5 Pa - 1 GPa |
探頭懸臂剛度 | 0.025 - 200 N/m |
探頭尺寸(半徑) | 3 - 250 μm |
最大壓痕深度 | 100 μm |
傳感器最大容量 | 200 |
測試環境 | air, liquid (buffer/medium) |
粗調行程 | X*Y:12×12 mm Z:12 mm |
加載模式 | Displacement / Load* / Indentation* |
測試類型 | 準靜態(單點,矩陣) 蠕變,應力松弛 DMA動態掃描 (E', E'', tanδ) |
動態掃描頻率* | 0.1 - 10 Hz |
內置擬合模型 | Young's Modulus (Hertz / Oliver-Pharr / JKR) |
*為可選升級配置 |
新型光纖干涉式懸臂梁探頭,利用干涉儀來監測懸臂梁形變。
創新型光纖探頭,彌補了傳統納米壓痕儀無法測試軟物質的問題,也解決了AFM在力學測試中的波動大,操作困難、制樣嚴苛等常見缺陷。
● 背景噪音低:激光干涉儀抗干擾強于AFM反射光路
● 制樣更簡單:對樣品的粗糙度寬容度高于AFM
● 剛度選擇更準確:平行懸臂梁結構有利于準確判別壓痕深度與壓電陶瓷位移比例關系,便于選擇合適剛度探頭來保證彈性形變關系的穩定性,進而獲得重復率更高、準確性更好的數據
● 借助功能強大而易于操作的軟件,用戶可以自由控制壓痕程序(載荷、位移等)。自動處理曲線的流程,可以獲得數據和結果的快速分析
● 原始參數完整txt導出,便于后續復雜處理的需要
● 利用Hertz接觸模型從加載部分計算彈性模量,與常用的Oliver&Pharr方法相比,更為適合生物組織和軟物質材料特性
年 份 | 期 刊 | 題 目 |
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2022 | Advanced Functional Materials | Engineering Vascular Self-Assembly by Controlled 3D-Printed Cell Placement |
2022 | Biomaterials | Hydrogels derived from decellularized liver tissue support the growth and differentiation of cholangiocyte organoids |
2021 | Biofabrication | 3D bioprinting of tissue units with mesenchymal stem cells, retaining their proliferative and differentiating potential, in polyphosphate-containing bio-ink |
2021 | nature communications | Janus 3D printed dynamic scaffolds for nanovibration-driven bone regeneration |
2020 | Environmental Science & Technology | Effect of Nonphosphorus Corrosion Inhibitors on Biofilm Pore Structure and Mechanical Properties |
2020 | Acta Biomaterialia | A multilayer micromechanical elastic modulus measuring method in ex vivo human aneurysmal abdominal aortas |